بررسی تأثیر تنظیم کننده‌های رشد گیاهی بر روی کالوس‌زایی و اندام‌زایی گردو (.Juglans regia L) رقم چندلر

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانش آموخته کارشناسی ارشد، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران

2 استادیار، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران

3 دانشیار، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران

10.34785/J020.2022.011

چکیده

گردو با نام علمی (.Juglans regia L) از خانواده گردوسانان (Juglandaceae) یکی از گونه‌های مهم خوراکی در میان خشک میوه‌ها است. به منظور تعیین بهترین تیمار کالوس‌زایی و اندام‌زایی بر روی ریزنمونه‌ی برگ و جوانه گردو در محیط کشت DKW آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح پایه کاملاً تصادفی انجام شد. در آزمایش اول که بر روی ریزنمونه برگ انجام شد، فاکتور اول تنظیم کننده‌ی رشد 2,4-D با غلظت‌های صفر، 3،2،1 میلی‌گرم در لیتر و فاکتور دوم تنظیم کننده رشد TDZ با غلظت‌های صفر، 4،2،1 میلی‌گرم در لیتر مورد بررسی قرار گرفت. در آزمایش دوم که با استفاده از ریزنمونه‌های جوانه انجام گرفت، تنظیم کننده رشد BAP با غلظت‌های صفر، 1، 2، 3 میلی‌گرم در لیتر و تنظیم کننده رشد IBA با غلظت‌های صفر، 01/0، 1، 5/2 میلی‌گرم در لیتر مورد بررسی قرار گرفت. در آزمایش اول، نتایج نشان داد بیشترین تعداد کالوس‌زایی در محیط کشت DKW حاوی 3 میلی‌گرم در لیتر2,4-D  و بیشترین میزان قهوه‌ای شدن برگ در محیط کشت حاوی 2 میلی‌گرم در لیتر 2,4-D و 4 میلی‌گرم در لیتر TDZ ایجاد گردید. در آزمایش دوم بیشترین میزان اندام‌زایی در محیط کشت حاوی 1 میلی‌گرم در لیتر IBA بدون حضور BAP مشاهده شد. نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد، امکان کالوس‌زایی از ریزنمونه برگ در محیط کشت DKW حاوی 3 میلی‌گرم 2,4-D و اندام‌زایی از ریزنمونه جوانه در محیط کشت DKW حاوی 1 میلی‌گرم در لیتر وجود داشت. همچنین در تیمار حاوی 2 میلی‌گرم در لیتر BAP و 1 میلی‌گرم در لیتر IBA کالوس‌زایی از ریزنمونه جوانه گردو مشاهده شد.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Effect of plant growth regulators on callogenesis and organogenesis in walnut (Juglans regia L.) cultivar Chandler

نویسندگان [English]

  • Kusar Shirali 1
  • Payam Pour Mohammadi 2
  • Khalil Alami Saeid 3
1 MSc. graduate, Department of Plant Production and Genetics,, Agricultural Science and Natural Resources University of Khuzestan, Mollasani, Iran
2 2- Assistant Professor, Department of Plant Production and Genetics,, Agricultural Science and Natural Resources University of Khuzestan, Mollasani, Iran
3 Associate Professor, Department of Plant Production and Genetics, Agricultural Science and Natural Resources University of Khuzestan, Mollasani, Iran
چکیده [English]

Walnut (Juglans regia L.) of the walnut family (Juglandaceae) is one of the most important edible species among dry fruits. In order to determine the best callus and organogenesis treatment on walnut leaf and bud explants in the DKW culture medium, a factorial experiment was conducted in the form of a completely randomized design. In the first experiment, leaf explants were cultured in DKW medium, the first factor was 2,4-D (0, 1, 2, 3 mg/l ), and the second factor was TDZ (0, 1, 2, 4 mg/l). In the second experiment, which was performed using bud explants, BAP growth regulator with concentrations of 0, 1, 2, 3 mg/l and IBA with 0, 0.01, 1, 2.5 mg / l were used. In the first experiment, the results showed that the highest number of callogenesis occurs in DKW medium containing 3 mg/l 2.4-D and the highest number of leaf browning occurs in medium containing 2 mg/l 2,4-D and 4 mg/l TDZ. In the second experiment, the highest rate of organogenesis was observed in a culture medium containing 1 mg/l IBA without BAP. The results of this study showed that there is a possibility of callus formation from leaf explants in DKW medium containing 3 mg 2,4-D and organogenesis of bud explants in DKW medium containing 1 mg/l. Also in the treatment containing 2 mg/l BAP and 1 mg/l IBA callus formation of walnut germ explants was observed.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Auxin
  • organogenesis
  • cytokinine
  • callus formation
  • walnut

مراجع

Elaleem, K.G.A., Modawi, R.S. and Khalafalla, M.M. 2009. Effect of plant growth regulators on callus induction and plant regeneration in tuber segment culture of potato (Solanum tuberosum L.) cultivar Diamant. African Journal of Biotechnology, 8(11): 2529-2534.
Ahmad, N., Fazal, H., Zamir, R., Khalil, S.A. and Abbasi, B.H. 2011. Callogenesis and shoot organogenesis from flowers of Stevia rebaudiana (Bert.). Sugar Tech, 13(2): 174-177.
Al-Khayri, J.M. and Naik, P.M. 2017. Date palm micropropagation: Advances and applications. Ciência e Agrotecnologia, 41(4): 347-358.
Aniel Kumar, O., Tata, S.S. and Rupavati, T. 2010. In vitro induction of callusogenesis in chilli peppers (Capsicum annum L.). Current Research, 3: 42-45.
Bagheri, A. and Saffari, M. 2009. In vitro culture of higher plants. Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran. 406P. (In Persian).
Baharan, E., Mohammadi, P.P., Shahbaziand, E. and Hosseini, S.Z. 2015. Effects off some plant growth regulators and light on callus induction and explants in date palm (Phoenix dactylifera L.) in vitro leaves culture. Plant Physiology, 5(4): 1473-1481. (In Persian).
Naidu, T.B., Rao, S.N., Mani, N.S., Mohan, Y.J. and Pola, S. 2010. Conservation of an endangered medicinal plant Centella asiatica through plant tissue culture. Drug Invention Today, 2(1): 17-21.
Baskaran, P. and Jayabalan, N. 2006. In vitro mass propagation and diverse callus orientation on Sesamum indicum L. an important oil plant. Agricultural Technology, 2(2): 259-269.
Castillo, A.M., Egana, B., Sanz, J.M. and Cistue, L. 1998. Somatic embryogenesis and plant regeneration from barley cultivars grown in Spain. Plant Cell Reports, 17(11): 902-906.
Chawla, H. 2011. Introduction to plant biotechnology. CRC Press.
Daneshvar Hossini AR, Ganji Moghadam E, Anahid S. 2010. Effects of media cultures and plant growth regulators in micro propagation of Gisela 6 rootstock. Ann Biol Res.; 1(2): 135-141.
Hossini, A.D., Moghadam, E.G. and Anahid, S. 2010. Effects of media cultures and plant growth regulators in micro propagation of Gisela 6 rootstock. Annals of Biological Research, 1(2): 135-141.
Das, R., Hasan, M.F., Hossain, M.S. and Rahman, M. 2008. Micropropagation of Centella asiatica L. an important medicinal herb. Progressive agriculture, 19(2): 51-56.
DeKlerk, G.J. 2006. Plant hormone in tissue culture. Plant Cell and Tissue Culture Phytopathology Biochemical, 17-25p.
Demiral, S. and Ülger, S. 2008. A research on propagation of Gisela 5 cherry rootstock by tissue culture. Akdeniz Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 21(1): 117-121.
FAO. 2020. https://www.fao.org/faostat/en/#data.
Hohtola, A. 1988. Seasonal changes in explant viability and contamination of tissue cultures from mature Scots pine. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 15(3): 211-222.
Khatun, N., Bari, M.A., Islam, R., Huda, S., Siddque, N.A., Rahman, M.A. and Mullah, M.U. 2003. Callus induction and regeneration from nodal segment of potato cultivar Diamant. Biological Sciences, 3: 1101-1106.
Mahdavian, M., Bouzari, N. and Abdollahi, H. 2010. Effects of culture media and growth regulators on proliferation and rooting of a vegetative Mahlab rootstock (SL-64). Seed and Plant Improvement, 1: 1-26.
Mojtahed, J. 2016. Walnut book. Ministry of Jihad Agriculture, Deputy Minister of Horticulture, Office of Cold and Dried Fruits.168p. (In Persian).
Nissen, S.J. and Sutter, E.G. 1990. Stability of IAA and IBA in nutrient medium to several tissue culture procedures. HortScience, 25(7): 800-802.
Rodriguez, R., Revilla, A., Albuerne, M. and Perez, C., 1989. Walnut (Juglans spp.). Biotechnology in Agriculture and Forestry, 5: 99-126.
Vahdati, K. and Khalighi, A. 1999. Persian walnut stooling in Iran. In IV International Walnut Symposium, 544: 527-530.
Vahdati, K. and Mojtahed, J. 2006. Nursery management and grafting of walnut. Khaniran Publications, 17p. (In Persian).
Yeung, E.C. 1995. Structural and developmental patterns in somatic embryogenesis. In Vitro Embryogenesis in Plants, 20 :205-247.

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار